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菁優(yōu)網(wǎng)CRISPR/Cas系統(tǒng)是細菌在進化中形成的一種防御機制。Cas蛋白能截取噬菌體的DNA片段,并將其插入到細菌自身的CRISPR基因中,整合有噬菌體DNA片段的CRISPR基因經(jīng)轉(zhuǎn)錄產(chǎn)生RNA,此RNA與Cas蛋白共同構(gòu)成CRISPR/Cas復(fù)合物,在此RNA引導(dǎo)下,該復(fù)合物能定點切割對應(yīng)的噬菌體DNA片段??茖W(xué)家通過改造此系統(tǒng),產(chǎn)生了CRISPR/Cas9基因編輯技術(shù),可以實現(xiàn)對DNA的定點切割,其工作原理如下圖所示。2019年上??蒲袌F隊通過基因編輯技術(shù)切除獼猴受精卵中的生物節(jié)律核心基因BMAL1,再利用體細胞克隆技術(shù),獲得了5只BMAL1基因敲除的克隆猴。這是國際上首次成功構(gòu)建出的一批遺傳背景一致的生物節(jié)律紊亂的獼猴模型。請回答下列問題:
(1)CRISPR/Cas系統(tǒng)中的Cas蛋白合成的場所是
核糖體
核糖體
,該系統(tǒng)需要對特定的DNA序列識別并切割,其功能類似于基因工程工具酶中的
限制性核酸內(nèi)切酶(限制酶)
限制性核酸內(nèi)切酶(限制酶)
,作用的化學(xué)鍵為
磷酸二酯鍵
磷酸二酯鍵
。推測該系統(tǒng)在細菌體內(nèi)的生理意義是
切割外源DNA,保護自身
切割外源DNA,保護自身
。
(2)由于Cas9蛋白沒有特異性,用CRISPR/Cas9系統(tǒng)切割BMAL1基因,向?qū)NA的識別序列應(yīng)具有的特點是能與
BMAL1 基因特定序列
BMAL1 基因特定序列
通過堿基互補配對結(jié)合。
(3)在個體水平鑒定BMAL1基因敲除成功的方法是觀察獼猴是否表現(xiàn)為
生物節(jié)律紊亂
生物節(jié)律紊亂
。
(4)該團隊利用一只BMAL1缺失的成年獼猴體細胞克隆出5只后代的實驗中,涉及的生物技術(shù)有
動物體細胞核移植、動物細胞培養(yǎng)、早期胚胎培養(yǎng)、胚胎移植
動物體細胞核移植、動物細胞培養(yǎng)、早期胚胎培養(yǎng)、胚胎移植
(答出兩項即可)。
(5)基因編輯后通過體細胞克隆得到的數(shù)只BMAL1缺失獼猴(A組),與僅通過基因編輯多個受精卵得到的數(shù)只BMAL1缺失獼猴(B組)比較,
A組
A組
(填“A組”或“B組”)更適合做人類疾病研究模型動物,理由是
A組遺傳背景一致(生物節(jié)律紊亂程度一致),提高了科學(xué)研究的可靠性和可比性(或:B 組可能存在遺傳背景差異,降低科學(xué)研究的可靠性和可比性)
A組遺傳背景一致(生物節(jié)律紊亂程度一致),提高了科學(xué)研究的可靠性和可比性(或:B 組可能存在遺傳背景差異,降低科學(xué)研究的可靠性和可比性)
。
【答案】核糖體;限制性核酸內(nèi)切酶(限制酶);磷酸二酯鍵;切割外源DNA,保護自身;BMAL1 基因特定序列;生物節(jié)律紊亂;動物體細胞核移植、動物細胞培養(yǎng)、早期胚胎培養(yǎng)、胚胎移植;A組;A組遺傳背景一致(生物節(jié)律紊亂程度一致),提高了科學(xué)研究的可靠性和可比性(或:B 組可能存在遺傳背景差異,降低科學(xué)研究的可靠性和可比性)
【解答】
【點評】
聲明:本試題解析著作權(quán)屬菁優(yōu)網(wǎng)所有,未經(jīng)書面同意,不得復(fù)制發(fā)布。
發(fā)布:2024/6/27 10:35:59組卷:37引用:1難度:0.7
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  • 1.某動物體內(nèi)含有研究者感興趣的目的基因,研究者欲將該基因?qū)氪竽c桿菌的質(zhì)粒中保存。該質(zhì)粒含有氨芐青霉素抗性基因(AmpR)、LacZ基因及一些酶切位點,其結(jié)構(gòu)和簡單的操作步驟如圖所示?;卮鹣铝袉栴}:
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    (1)制備重組質(zhì)粒常用同種限制酶的原因是能產(chǎn)生
     
    。為了使質(zhì)粒DNA與目的基因能連接形成重組質(zhì)粒,還需要在混合物中加
     
    。
    (2)培養(yǎng)基中除了加入大腸桿菌所必需的營養(yǎng)物質(zhì)外,還需要添加
     
    以便篩選導(dǎo)入目的基因的大腸桿菌。
    (3)為了使大腸桿菌處于一種能
     
    的生理狀態(tài),一般先用Ca2+處理大腸桿菌細胞。
    (4)將質(zhì)粒和目的基因的混合物與上述處理后的大腸桿菌混勻,制備轉(zhuǎn)基因大腸桿菌,取0.1ml上述溶液采用
     
    法接種于培養(yǎng)基表面,在37℃下倒置培養(yǎng)16 h。經(jīng)培養(yǎng)后,分別統(tǒng)計轉(zhuǎn)目的基因大腸桿菌的菌落數(shù)和總菌落數(shù),并計算轉(zhuǎn)化效率。理論上轉(zhuǎn)目的基因受體菌的菌落呈現(xiàn)
     
    色,原因是
     
    。實驗中實際轉(zhuǎn)化效率介于50%~85.7%,原因是
     
    發(fā)布:2024/9/15 3:0:8組卷:1引用:2難度:0.6
  • 2.HSV-1是單純皰疹病毒的一種類型,HSV-1病毒顆粒的組裝主要由包裝信號序列(a′)介導(dǎo)??蒲腥藛T從HSV-1基因組中分離出a′,利用基因工程技術(shù)構(gòu)建了質(zhì)粒pHSL并進行了相關(guān)實驗,流程如圖1。請回答下列問題。
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    注:LacZ的表達產(chǎn)物β-半乳糖苷酶能將無色化合物X-gal水解產(chǎn)生藍色物質(zhì)而使細胞變藍
    (1)過程①先用
     
    酶將HSV-1的DNA酶解成若干片段,再利用
     
    與含有a′的酶解片段進行雜交,根據(jù)陽性信號逐步篩選出盡可能短的a′所在片段。
    (2)過程②中使用的限制酶是
     
    。過程③采用的方法是
     
    。過程④在轉(zhuǎn)染、培養(yǎng)Vero細胞時,常在培養(yǎng)液中添加動物血清,其目的是
     
    。
    (3)tsK株是具有感染性的HSV-1溫度敏感株。在tsK株的輔助下,pHSL能組裝成假病毒(不含完整病毒基因組的顆粒),從而獲得tsK株和含假病毒的混合毒株。圖2是Vero細胞連續(xù)傳代過程中,混合毒株的滴度(代表單位體積液體中病毒顆粒的多少)變化曲線及每代中假病毒的占比(柱形圖)。
    ①研究中,選用
     
    代混合毒株用于后續(xù)神經(jīng)細胞的接種實驗可減少tsK株可能造成的細胞毒性,理由是
     
    。
    ②為驗證假病毒能否感染體外培養(yǎng)的神經(jīng)細胞并表達LacZ基因,科研人員將混合毒株與大鼠神經(jīng)細胞按一定比例在
     
    ℃下混合培養(yǎng)48h,用含
     
    (物質(zhì))的檢測液檢測發(fā)現(xiàn)大約20%的細胞變藍,說明
     
    。
    發(fā)布:2024/9/16 0:0:8組卷:4引用:2難度:0.6
  • 3.癌細胞表面蛋白“PDL-1”與T細胞表面蛋白“PD-1”特異性結(jié)合后,可抑制T細胞活性并啟動其凋亡程序,導(dǎo)致腫瘤細胞發(fā)生免疫“逃逸”。研究者對“PD-1”基因進行克隆、表達及生物學(xué)活性鑒定,為制備抗體打基礎(chǔ)。研究中所用引物α和β堿基序列見圖1,幾種常用限制酶名稱及識別序列與酶切位點見圖2:
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    (1)首先提取細胞中的mRNA逆轉(zhuǎn)錄生成cDNA作為模板:設(shè)計含有不同的限制酶切位點的α和β序列為引物,通過
     
    技術(shù)擴增目的基因。
    (2)為保證目的基因和載體正向連接,選用圖中的名稱為
     
    的限制酶將質(zhì)粒和目的基因進行切割,再用DNA連接酶構(gòu)建表達載體。該表達載體的組成,除了目的基因、標(biāo)記基因(抗卡那霉素基因)外,還必須具有
     
    等(寫出2點即可)。
    (3)而后一定溫度下,與經(jīng)過Ca2+處理的感受態(tài)大腸桿菌混合培養(yǎng)在含
     
    培養(yǎng)基中,可篩選出已經(jīng)完成轉(zhuǎn)化的大腸桿菌,繼續(xù)培養(yǎng)該種大腸桿菌以擴增重組DNA。
    (4)將擴增后的“載體A/PD-1重組DNA”轉(zhuǎn)入可高度表達外源基因的原代293T細胞。一段時間后,為確定PD-1基因是否表達,檢測細胞膜表面是否具有
     
    。研究中還會有一步驟是只將載體A轉(zhuǎn)入293T細胞,其目的是
     
    。
    發(fā)布:2024/9/17 0:0:8組卷:28引用:5難度:0.6
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